A constant battle for anyone living or working on the water is biofouling: the longer any structure, from boats to buoys, remains in the water, the more that life is able to accumulate on its submerged surfaces. First come bacteria and algae, and soon seaweeds and small invertebrates will follow. Before long, any surface that stays submerged in the ocean for long enough becomes its own little reef! This process (called biofouling) increases drag on vessels, and it can damage infrastructure. Furthermore, organisms growing on the hulls of shipping vessels can become invasive as they’re spread throughout global trade routes.
Seaman scrapes barnacles from the bottom of a boat. Image source: Wash Bremerton.
While biofouling is a bane for industries across the world, it also enables one of my favourite hobbies: dock fouling.
Floating docks are found all around my hometown of Victoria, British Columbia (as in most coastal cities). These docks create a stable, protected habitat for an entire ecosystem of biofouling organisms. Horizontal, floating structures that stay in one place are non-existent in nature, so the habitats created by floating docks are extremely novel, leading to unique epiphytic communities developing on and around them (Holloway and Connell, 2002). In combination with the static support pilings that host their own separate communities, urban marinas can be overlooked oases of biodiversity.
Plumose anemones (Metridium sp.) and northern feather duster worms (Eudistylia vancouveri) growing on an abandoned fishing boat in the Tofino marina. Image source: Nat Kennedy.
For me, marinas create a floating free aquarium where I can see incredible animals without having to touch a snorkel or a scuba tank. My favourite activity when I visit home is tide pooling, but it is dependent on the tide schedule, which doesn’t always cooperate with my visit. Plus, the intertidal zone can be slippery and difficult to access for some people. Dock fouling around marinas is free and accessible to anyone, no matter the tides, and the life growing off these docks can be beautiful if you just take the time to look.
A northern featherduster worm (Eudistylia vancouveri) photographed off the side of a dock in the Oak Bay marina. Image source: Nat Kennedy.
Plumose anemones (Metridium sp.) photographed off the side of a dock in the Oak Bay marina. Image source: Nat Kennedy.
Plumose anemones (Metridium sp.) photographed off the side of a dock in the Oak Bay marina. Image source: Nat Kennedy.
An inventory of floating structures from 5 cities in British Columbia coast identified 174 macroinvertebrate taxa that can be found in these novel habitats (Lu et al., 2007), but the number is likely greater than that. Very little research seems to have been done on the biodiversity of dock ecosystems, which is a shame.
Based on iNaturalist data, there are at least 28 species of fish and over 100 invertebrate taxa observed in the Oak Bay marina alone (where many of my photos were taken). This includes anemones, tubeworms, shrimp, crabs, tunicates, seastars living on the docks, as well as benthic invertebrates like jellies or sea butterflies that have been spotted floating through the marina waters (iNaturalist, 2026).
Mushroom tunicates (Distaplia occidentalis) living on kelp attached to the floating docks in the Oak Bay marina. Image source: Nat Kennedy.
Mushroom tunicates (Distaplia occidentalis) living on kelp attached to the floating docks in the Oak Bay marina. Image source: Nat Kennedy.
Stiletto coastal shrimp (Heptacarpus stylus) living on kelp attached to the floating docks in the Oak Bay marina. Image source: Nat Kennedy.
Manacled sculpin (Synchirus gilli) living on kelp attached to the floating docks in the Oak Bay marina. Image source: Nat Kennedy.
I encourage anyone visiting a coastal region to take a look at what’s growing off of the local docks. The diversity is surprising and often beautiful. You also tend to be rewarded the longer and closer you look; much of the life only becomes apparent after a few minutes of careful observation and keeping an eye out for tiny movements. Watching the barnacles feed is one of my favourite details, but most people will never notice it! A waterproof phone case or even a sturdy Ziploc bag can further enhance the experience, as many of the colours and finer details of dock fouling organisms can be hard to see on a breezy day (just don’t forget to use a wrist strap!).
Can you spot it? A tiny Horned Nudibranch (Hermissenda crassicornis) hides in the mussels on a Port-Alice pier. Image source: Nat Kennedy.
About the Author
Nat Kennedy is a fourth-year PhD student in the Handa lab (UQAM). They are studying the impact of urban forest management practices on soil invertebrate communities. Despite being all in on bugs, their first love was the ocean! Trips to the beach are a serious affair, and they will structure entire vacations around low tide schedules. Find more cool tiny creatures on their Instagram! @send.nudibranchs
Par Thomas Villeneuve, étudiant à la maîtrise à l’Université de Montréal
Le bioblitz a débuté le samedi 23 août à 6h du matin. Cet exercice consiste à recenser le plus d’espèces possible dans le but d’explorer la diversité des milieux naturels du Québec. Nous sommes partis de Québec en direction de Montmagny en groupe de 4, soit trois botanistes et une ornithologue. C’est à partir de là que nous avons pris le traversier en direction de l’Isle-aux-Grues.
L’Isle-aux-Grues est un endroit avec une énorme valeur autant écologique que culturelle. Cette petite île perchée au milieu du fleuve St-Laurent abrite des marais intertidaux sujet à des marées quotidiennes d’eau douce, ce qui crée un milieu très intéressant avec une forte concentration de plantes endémiques. Puisque l’Isle-auxGrues se situe à l’extrémité de l’estuaire d’eau douce, l’eau y est un peu saumâtre, ce qui explique des formes bizarres de plusieurs taxons endémiques, qui fait sourciller les botanistes.
C’est donc un lieu intéressant pour les botanistes, bien que le dernier inventaire rigoureux qui y a été fait date des années 1970. Avec moins de 800 observations iNaturalist (+/- 500 observations de plantes, 100 observations d’insectes, 60 observations d’oiseaux et 4 observations de bryophytes), cette île mérite d’être mieux inventoriée pour comprendre la diversité biologique qu’elle abrite. De plus, plusieurs espèces en situation précaire s’y trouvent (les plantes suivantes: Cicutaire de Victorin, Gentiane de Victorin, Floerkea proserpinacoides, Strophostyles helvola, Platanthera flava var. herbiola, et les oiseaux suivants: troglodyte à bec court, hibou des marais, râle jaune, bruant de Nelson).
Nos objectifs pour cette sortie étaient dans un premier temps d’observer le plus de taxons rares pour vérifier les occurrences et fournir ces données au Centre de données sur le patrimoine naturel du Québec (CDPNQ). Nous voulions aussi essayer de trouver Pedicularis palustris, une plante très charismatique qui a historiquement été observée à l’Isle-aux-Grues, mais plus depuis 1970. Pour les oiseaux, notre ornithologue voulait dresser une liste des oiseaux observés et tenter d’en recenser le plus grand nombre possible et, on l’espère, y inclure certaines espèces en situation précaire.
Observation de l’avifaune (à gauche) et des plantes de milieux humides dans le marais intertidales (à droite).
Nous sommes donc arrivés sur l’île autour de 8h du matin et nous nous sommes dirigés vers l’extrémité Est de l’Île-aux-Oies. Nous avons visité quelques sites qui étaientdes friches agricoles humides et nous y avons fait 136 observations de plantes, comptabilisant 93 espèces différentes. Nous avons ensuite visité les marais intertidaux et c’est là que nous avons vu deux espèces menacées: la Cicutaire de Victorin et la Gentiane de Victorin (nous avons dénombré une population de 16 individus pour cette dernière, information qui a été relayée au CDPNQ). Nous avons observé qu’à ce site, l’érosion représente une réelle menace pour la population de Gentiane de Victorin.
Les deux espèces rares retrouvées dans les marais de l’Isle-aux-Grues: la cicutaire de Victorin (Cicuta maculatavar. victorinii) à gauche et la Gentiane de Victorin (Gentianospis victorinii) à droite.
Suite à la visite des marais côtiers, nous avons fait une pause dîner et en avons profité pour rendre visite à la mythique fromagerie de l’Isle-aux-Grues. Nous avons ensuite continué notre visite de l’île en faisant le tour de la réserve naturelle Jean-Paul-Riopelle, une érablière tricentenaire. Nous avons dormi en camping et pris le traversier le lendemain matin avant de revenir à Montréal.
Le bilan de notre bioblitz sur l’Isle-auxGrues est 202 observations de plantes comptabilisant 129 espèces, et 36 espèces d’oiseaux. Nous avons cherché Pedicularis palustris, malheureusement en vain. Il est possible que l’espèce y soit toujours présente, mais nous étions un peu tard dans la saison pour observer ses magnifiques inflorescences. Nous avons tout de même pu observer certaines espèces rares. Voici certaines espèces observées qui sont dignes de mention : Cicuta maculata var. victorinii, Gentianopsis victorinii, Cyperus engelmanii, Cyperus diandrus, Lycopus laurentianus, Bidens vulgata.
Cyperus diandrus (à gauche) et Cyperus engelmanii (à droite)
Cuscuta gronovii, une plante hémiparasite, c’est-à-dire qui prélève chez son hôte de l’eau et des minéraux.
À propos de l’auteur
Thomas Villeneuve est un étudiant à la maîtrise dans le laboratoire d’Étienne Leveillé-Bourret à l’Institut de recherche en biologie végétale de l’Université de Montréal. Son projet de recherche porte sur la taxonomie de la Cicutaire de Victorin, une plante endémique et menacée au Québec, dont les incertitudes taxonomiques entravent la conservation.
Par Ariane C. Peroni, étudiante de doctorat à l’Université Concordia
Du 6 juin 2024 au 11 août 2024, j’ai effectué une recherche de terrain pour collecter des données sur une population de capucins blonds. Cette population vit au cœur d’un fragment de 270 hectares de forêt Atlantique, la « Mata Atlântica », dans l’État de Paraíba au nord-est du Brésil. Après avoir passé 5 jours dans la ville de Natal, où j’ai eu la chance de visiter un centre de secours spécialisé dans la réhabilitation et la réintroduction des capucins, je me suis rendue à la maison de terrain située à Tabu dans la ville de Caaporã, accompagnée d’une autre étudiante de l’Université Concordia et de trois étudiants de l’Universidade Federal do Rio Grande do Norte. Tabu est une ferme industrielle qui avait autrefois des champs de canne à sucre tout autour du fragment où vivent les capucins blonds.
Les capucins blonds (Sapajus flavius) sont une espèce de singe en voie de disparition selon l’Union Internationale pour la Conservation de la Nature (UICN). La déforestation liée à l’agriculture, provoquant une fragmentation intense de la forêt Atlantique – leur habitat principal –, est la plus grande menace à laquelle ils sont confrontés, en plus du braconnage et des diverses pressions anthropiques. Travailler avec une espèce en danger et étudier leur flexibilité comportementale a été une expérience très enrichissante.
À cette époque, la population que j’ai eu la chance d’étudier a recours aux cannes à sucre comme ressource de secours en période de rareté alimentaire. Toutefois, il a été observé que cette denrée est maintenant consommée tout au long de l’année et bien intégrée dans leur régime alimentaire. Les cannes à sucre représentent donc une ressource cruciale pour la survie de cette population, qui vit dans un fragment complètement isolé du reste de la Forêt Atlantique.
Le but de cette recherche de terrain était, d’une part, de me former à l’étude d’une espèce en danger dans son milieu naturel et, d’autre part, de récolter des données sur son comportement de recherche alimentaire et ses techniques de manipulation des aliments de secours. Pour cela, j’ai appris à localiser les singes par un de leur cri spéciaux, à les suivre sans interaction directe et à utiliser diverses méthodes d’échantillonnage comportemental.
Le fragment de forêt est considéré comme un milieu naturel dégradé. Ces 20 dernières années, il était entouré de champs de canne à sucre qui ont été subitement enlevés en 2023 et remplacés principalement par d’autres terres agricoles dédiées à la culture du manioc et du maïs. Il ne reste plus que deux parcelles de cannes à sucre. Les effets de ce changement sur leur comportement alimentaire peuvent déjà être observés.
Sur le terrain, mes collaborateurs et moi utilisions des jumelles ainsi qu’une caméra. Tout en filmant, je décrivais ce que je voyais pour réaliser mes échantillonnages ciblés. Un échantillonnage ciblé appelé continuous focal sampling est une méthode qui consiste à sélectionner aléatoirement un individu du groupe observé et à documenter/enregistrer tous les comportements d’intérêt observés pendant une période définie. À noter que plusieurs méthodes d’échantillonnage ont été testées, notamment l’application « Animal Behavioral Pro » développée par Nicholas Newton-Fisher. Cette application, disponible sur Apple, permet de collecter des données comportementales en suivant un éthogramme strict préalablement implémenté. Lorsqu’un enregistrement commence, les comportements, les individus et les modificateurs définis dans l’éthogramme sont présentés, et il suffit de cliquer sur l’élément correspondant à ce que l’observateur observe. Il est possible d’ajouter des notes à la fin de chaque échantillon collecté.
Mes premières observations ont conduit à de nouvelles hypothèses. Par exemple, si je m’attendais à ce que le nombre et la complexité des manipulations soient liés à l’expérience et à l’apprentissage, il semble qu’en réalité cela soit davantage lié à la force physique. En effet, les mâles, étant plus grands et physiquement robustes, utilisaient leur poids pour casser la canne à sucre, puis la mordaient et l’arrachaient pour la consommer. Les femelles et les individus n’ayant pas atteint leur pleine maturité devaient plutôt utiliser leurs deux mains ainsi que leurs dents pour déterrer la canne à sucre. Ces derniers utilisaient une combinaison de techniques plus complexes : généralement faire tourner la canne à sucre sur elle-même avec une ou deux mains, tout en maintenant l’extrémité de la canne dans leur bouche et en mordant afin de pouvoir consommer le sucre.
De plus, si cette population utilisait un mode de recherche alimentaire appelé fission-fusion — séparation du groupe en sous-groupes pour augmenter les chances de succès — j’ai constaté que la population était divisée en deux groupes distincts, qui se redivisaient ensuite. Le premier groupe comprenait essentiellement des mâles et des subadultes, dont les individus étaient assez éloignés les uns des autres par moments. Le deuxième groupe était composé d’individus plus jeunes. Plusieurs fois dans la journée, les deux groupes se réunissaient à la lisière du fragment, où subsistent les champs de cannes à sucre. Le fait que les champs de cannes à sucre aient été pratiquement entièrement remplacés soulève de nombreuses questions quant à l’avenir de la population.
Mes collègues et moi avons malheureusement assisté à une altercation entre deux fermiers et des singes. Les fermiers tentaient de les effrayer car ils avaient constaté que certains venaient manger leurs récoltes. Si Tabu, étant une grande ferme industrielle, se souciait peu de quelques cannes à sucre mangées par les singes, les fermiers plus indépendants, dont l’histoire nous est inconnue, risquent d’être moins tolérants. Le devenir de cette population est donc encore plus incertain face à l’émergence de nouvelles problématiques depuis 2023. En effet, l’implémentation de cannes à sucre dans leur alimentation a jusqu’à présent aidé à la survie des capucins blonds, mais les nouvelles ressources agricoles autour du fragment ne promettent pas de compenser la réduction drastique du nombre de cannes à sucre disponibles.
Pour conclure, un grand merci au Dr S. Turner et à R. Ferreira pour leur confiance et pour m’avoir permis de réaliser cette recherche de terrain. Merci également au laboratoire COLLAB du Dr Renata Ferreira à l’Universidade Federal do Rio Grande do Norte (Natal) pour m’avoir accueillie, ainsi qu’à MITACS, à l’Université Concordia et au CSBQ pour le financement de ce projet, sans lesquels je n’aurais jamais pu vivre cette expérience si enrichissante.
À propos de l’auteure:
Ariane C. Peroni est étudiante en deuxième année de doctorat au Département de géographie, urbanisme et environnement de l’Université Concordia, à Montréal (Canada). Elle est sous la supervision de la Dre Sarah E. Turner et fait partie du laboratoire PIES (Primatologie et sciences environnementales interdisciplinaires). Ses recherches visent à comprendre comment les opportunités offertes par l’habitat influencent les prises de décision en matière de mouvement ainsi que les comportements associés au stress chez des groupes de tamarins vivant en milieu naturel à la station biologique Los Amigos, dans la région de Madre de Dios, au Pérou, ainsi que chez des groupes vivant en captivité. L’autrice considère que la recherche doit avant tout reposer sur la collaboration et elle est également heureuse de pouvoir collaborer avec le Biodôme de Montréal ainsi qu’avec l’organisme à but non lucratif Field Projects International, qui mène des programmes de recherche, de suivi écologique et de conservation de la biodiversité à la station biologique Los Amigos. LinkedIn: www.linkedin.com/in/ariane-peroni-1833561a3
For less than $15 (or 3 payments of $3.99), you too can unlock a strange new world using the magic of ultraviolet light!
It is shocking just how many things glow in the dark when you go exploring with a blacklight. Most folks know that scorpions glow green under UV, and this trick has been well exploited by researchers hunting for scorpions in the desert at night. Despite knowing this myself, it was still incredible to see in person the first time I went light trapping in the Southern US. Photos just can’t quite prepare you for how bright they glow in person.
Scorpion biofluorescence photographed during light trapping near Fayetteville, Arkansas. Image source: Nat Kennedy.
People have known for decades that scorpions fluoresce, but there is still no consensus as to why this happens. This trait does seem to be ancestral, though, as other basal chelicerates such as horseshoe crabs and sea scorpions also fluoresce using the same mechanism (Rubin et al., 2017).
Scorpions are not alone in their glowing glory, and over the years I have been delighted to find dozens of glowing lifeforms during nighttime explorations. The first time I went light trapping for moths, I was camping on the coast of Vancouver Island. Sadly, my $10 UV flashlight did very little to attract moths, so I decided to just play around with it at my campsite in the hopes of finding some glowing mushrooms. What I didn’t expect was that there is a local species of millipede that glows bright blue under UV! The fluorescence was so intense that it felt like I was looking at a photoshopped image, but it was real life.
Since that day, I try to bring a UV light with me whenever I go adventuring after dark. I have since found the glowing mushrooms that I first hoped to see, although it was exceedingly difficult to photograph them with any clarity on my ancient iPhone:
My favourite place to take the UV flashlight has to be the intertidal zone. In my experience, hiking through the woods may net a glowing mushroom or a millipede if you’re lucky, but a rocky seashore is almost guaranteed to light up in a hidden rainbow of colour.
In BC, the aggregating anemones fluoresce a ghostly green against the deep, blood-red backdrop of encrusting algae and kelp fronds. Unlike most other animals, the biofluorescence of anemones does appear to have a purpose, as fluorescent proteins have been shown to protect cells against oxidative stress (Clarke et al., 2024):
It’s not just invertebrates, biofluorescence has been observed in birds, some frogs, lizards, and even mammals! While it may be invisible to us without a blacklight, other animals may be able to detect this fluorescence. For reptiles and amphibians, this fluorescence is possibly related to conspecific detection in low light, but there is still much uncertainty about the role of fluorescence for birds and mammals (Jeng, 2019).
So heed my advice! Invest now! For only $8.99 (sacrificed to the devils at amazon.com), you too can enjoy the delights of our fluorescent planet!
About the Author Nat Kennedy is a fourth-year PhD student in the Handa lab (UQAM). They are studying the impact of urban forest management practices on soil invertebrate communities. Despite being all in on bugs, their first love was the ocean! Trips to the beach are a serious affair, and they will structure entire vacations around low tide schedules. Find more cool tiny creatures on their Instagram! @send.nudibranchs
By Siena Margorian, master’s student at McGill University
One of the biggest challenges to studying the American eel is the mystery surrounding its life cycle. I am currently an MSc student at McGill in the only social science laboratory in the Department of Natural Resource Sciences. My research is focused on understanding the current social-ecological fit of American eel conservation and governance in Canada. This means I want to understand how the current state of American eel ecology in our waters is interrelated with the social dynamics of those who interact with the eel.
As you can expect, social science data collection involves more conversation than getting out in the water (although I did have the opportunity to meet an eel this summer). If you have never heard of the American eel, or if you didn’t know that there were eels in Canada (no, not the electric kind), you are not alone! But you are in for quite a surprise.
Here is the illustrated life cycle of the eel I met this summer:
American eel biology and ecology are essential to understanding eel conservation and management in Canadian waters. Although the biology and life cycle of the American eel are not the central focus of my research, the questions and mysteries surrounding them are part of what makes conservation efforts so challenging. I hope that one day, we discover the secrets of the eel, but maybe they will prefer to remain mysterious…
About the Author Siena Margorian is a master’s student in the Sustainable Futures Research Laboratory at McGill University, supervised by Dr. Gordon M. Hickey. She studies the social-ecological fit of American eel conservation and governance in Canada.
By Alexandre Fuster, Postdoctoral researcher at Université de Sherbrooke and the Insectarium of Montreal
What if a snail shell could tell us not only where a snail lived, but also who it had interacted with?
This question sounds strange, but it pushed me into one of the riskiest and most exciting adventures of my PhD. Thanks to the CSBQ Excellence Award, I travelled to the University of Idaho to work with Dr. Christine Parent’s lab and explore a new idea: using museum collections of Galápagos land snails to reconstruct hidden host-parasite interactions.
The story began with a fascinating discovery. Some land snails can kill parasitic nematodes using their shells. Yes, their shells. The same structure we usually think of as protection against predators or drying out can also become a defensive weapon against parasites. In evolutionary biology, this is called co-option: when a structure that evolved for one function is repurposed for another. Feathers, for example, likely had early roles in insulation or display before becoming central to flight in birds.
In these snails, nematodes become trapped and encapsulated inside the shell. This might sound like a weird natural history detail, but for us, it opened a door. If nematodes remain preserved inside shells, could we recover their DNA from museum specimens? And if we could, could we reconstruct which parasites interacted with which snail species across islands, habitats, and evolutionary history?
An encapsulated nematode within a snail shell, under the microscope. Photo by Alex Fuster.
For my research on Naesiotus, the largest radiation of land snails in the Galápagos, this possibility was thrilling. These snails are endemic, diverse, and distributed across a clear island context. Their evolution, traits, and habitats have been studied for years, but one major piece was missing: their ecological interactions. If we could recover parasite DNA from shells, we could build a host–parasite network and ask how interactions relate to diversification.
The project was risky from the start. We did not know whether Naesiotus shells would contain encapsulated nematodes. We did not know whether DNA could be extracted from those tiny traces either. Even obtaining snail DNA from old shells can be challenging, and here we were hoping to recover parasite DNA from microscopic structures preserved inside them. There were no ready-made protocols. No guarantee. Just an idea, a collection, and a lot of curiosity.
The CSBQ award helped me to follow that idea. In Idaho, I began working with Ian Oiler, a PhD student in Christine’s lab, and Jane Dosart, manager of the lab. We opened hundreds of tubes containing shells collected from volcanoes across the Galápagos Islands: unique, endemic, and often endangered specimens, each carrying a small piece of natural history.
At first, we were simply searching for signs of encapsulated nematodes. Then we found one. Then another. Then another. Soon, the excitement became contagious. We were astonished to see encapsulations across all the species we examined. Tiny structures inside shells became evidence of past encounters between hosts and parasites. It felt like opening biological time capsules, one shell at a time.
The month in Idaho was intense: long days, non-stop lab work, and constant problem-solving. It was also deeply stimulating. I exchanged ideas with researchers working on phylogenetics, evolution, and bioinformatics. As an ecologist, I often use phylogenies as tools, but being surrounded by people who develop these methods reminded me that phylogenetics is an entire discipline of its own.
Then came the moment of truth: DNA extraction and sequencing. Normally, one would carefully test primers, optimize protocols, and sequence a small pilot set first. But we had limited time, and this project was already a leap into the unknown. We made our best bet, using primers and pipelines from recent work on nematode DNA, sent the samples off, and waited.
Ian Oiler (left) and myself (right), immersed in thousands of snail shells, being the first to witness interactions from the past. Photo by Jane Dosart.
Those weeks felt long. Would there be enough DNA? Would the primers work? Would we recover anything meaningful?
When the results came back, they were better than we had dared to expect. It worked. And it worked remarkably well.
We recovered a large diversity of nematodes associated with Naesiotus species, including many taxa previously undocumented from the iconic biodiversity of the Galápagos. From shells sitting in collections, we reconstructed a hidden host–parasite network across the archipelago and began testing how ecological interactions and diversification are connected – if you are curious, this work is now available as a preprint.
Perhaps the most exciting part is that this approach does not have to stop with Naesiotus.
Many land snail radiations exist on oceanic islands around the world, and many are represented in museum collections. If encapsulated nematodes occur in other systems, shells could become archives of ecological interactions across space and time.
This project also taught me something I would like to share with other students: curiosity becomes much more powerful when it is shared.
The idea began because I came across the work of Robbie Rae, whose research on snail–nematode interactions fascinated me, and I wrote to him. That first exchange helped turn a strange observation into a possible project. But curiosity alone was not enough. The project became possible because supervisors, collaborators, students, and technicians were willing to be curious with me. None of us knew whether it would work.
For me, this experience was a reminder that curiosity is worth following, especially when it brings other people into the question. Write to those whose idea made you think differently. Ask the strange question. Talk to people before the idea feels fully polished. Some ideas will not work, of course. But sometimes, if you find people willing to be curious with you, a risky intuition can become a discovery.
The story is still unfolding. The Galápagos National Park has invited us to present this work at its 7th Science Symposium, and we are now discussing an exhibition at the Charles Darwin Foundation to showcase the hidden complexity of biodiversity: the world of parasites, the evolutionary creativity of snails, and the enormous value of scientific collections.
Museum specimens are often seen as records of the past. But sometimes, they also contain the discoveries of the future.
About the Author Alexandre Fuster recently finished his PhD with Dominique Gravel, studying ecological and evolutionary dynamics of interaction networks. He is currently starting a postdoc with Guillaume Blanchet (Université de Sherbrooke) and the Insectarium of Montreal to study how climate change may impact insect communities in the Arctic.
